如何通过DLS技术检测抗体聚集

做免疫试剂开发、抗体生物素化实验的科研人,大概率都踩过这些坑:偶联效率忽高忽低、检测灵敏度频频掉线,明明操作步骤没出错,实验结果却始终无法复现。其实背后藏着一个容易被忽略的“隐形元凶”——抗体聚集!

抗体作为生物实验的“核心选手”,在储存、运输或实验处理过程中,很容易悄悄“抱团”形成二聚体、多聚体甚至更大聚集体。这些看不见的聚集物会导致微球表面抗体覆盖不均,有效修饰表位减少,不仅拉低实验效率,还会干扰检测结果的准确性,让前期投入的时间和样本都白费。

注:示意图清晰展示抗体从单体状态,逐步形成二聚体、多聚体,最终聚集为大颗粒的全过程,标注关键结构名称,直观呈现“抱团”危害

想要精准识破抗体聚集的“小把戏”,动态光散射法(DLS)必须拥有姓名!作为科研圈公认的快速无损检测技术,它就像一双“火眼金睛”,能通过捕捉溶液中抗体布朗运动引发的散射光强度变化,结合Stokes-Einstein方程,精准算出抗体的流体力学直径和多分散指数(PDI),让聚集问题无所遁形。

动画示意图分步演示激光照射、颗粒散射、信号捕捉、数据计算的完整流程,用动态效果展示“小颗粒信号衰减快、大颗粒信号衰减慢”的核心差异,标注激光光源、检测器、样品池等关键组件

简单来说,激光照射样品后,小颗粒运动速度快,散射光信号波动衰减迅速,大颗粒则相反。通过解析相关函数曲线,就能清晰获取抗体粒径分布的核心信息,无需复杂处理,就能快速判断抗体状态。

不过想要用DLS拿到可靠数据,测试前的准备工作得做足:

  • 样品浓度建议控制在1-2mg/mL,最高不超过5mg/mL,还需验证不同稀释度的一致性;
  • 比色皿可根据样品体积灵活选择,哪怕是2μL以下的超微量样品也能适配;
  • 仪器设置上,25℃是常用温度,水溶液折射率默认33,选择90°或173°背散射检测,能减少多重散射对高浓度样品的影响。
流程图以步骤化形式呈现“样品制备→浓度调整→比色皿选择→仪器参数设置→启动检测→数据输出”全流程,关键步骤标注注意事项,如“样品浓度验证”“背散射角度选择”

拿到DLS报告后,重点盯紧三个核心指标就够了:

  1. 粒径分布:单体抗体主峰通常在10-15nm,15-30nm出现小峰可能是二聚体/多聚体,若出现大于100nm的峰则提示严重聚集;
  2. PDI值:≤0.05为高度均一样品,05-0.7含少量聚集,大于0.7则聚集严重,优质抗体的PDI应≤0.2;
  3. 单体比例:以主峰面积占比衡量,优质抗体需超过95%。
对比图分为左右两栏,左侧展示优质抗体:相关函数曲线快速衰减无拖尾、粒径分布图单一主峰(11nm左右)、PDI=0.06;右侧展示劣质抗体:曲线尾部拖尾、双粒径峰(13.12nm+1049nm)、PDI=0.27,标注核心差异数据

给大家举两个真实检测案例:某抗体的相关函数曲线在100μs内快速衰减,PDI仅0.06,11nm左右的单一主峰占比100%,属于分散性极佳的优质样品;而另一款样品虽衰减较快,但曲线尾部拖尾,PDI达0.27,还出现了1049nm的大颗粒峰,说明存在轻微聚集,不适合用于关键实验。

其实很多科研人都忽略了“实验前质控”这一步。在抗体偶联、生物素化等关键实验前,用DLS做一次快速检测,就能有效筛选出优质样品,从源头避免因聚集问题导致的实验返工。如果检测发现PDI大于0.3,建议结合SEC-HPLC/SEC-MALS进一步验证,确保实验基础扎实。

科研路上,细节决定成败。有了DLS这位“质控好帮手”,就能精准把控抗体状态,保障实验的可重复性和结果准确性,让抗体发挥最佳性能,帮你少走弯路、高效出成果!

滚动至顶部